((نقلاً عن موقع نحلة www.na7la.com بإدارة الدكتور طارق مردود))
من أعمال مؤتمر بحوث النحل الأمريكي الواحد والثلاثون ، 2009
عقد مؤتمر بحوث النحل الأمريكي في 4-6 فبراير 2009، في جامعة فلوريدا في غينسفيل ، فلوريدا. وسيعقد المؤتمر الثاني والثلاثون لبحوث النحل الأمريكي بالاشتراك مع الاتحاد الأمريكي لتربية النحل في أورلاندو بولاية فلوريدا في 2010. وفيما يلي ملخصات عن مؤتمر 2009.
التي نشرت في مجلة النحل الأمريكية يونيو 2009
ترجمة الدكتور طارق مردود
قياس تأثير (شمع) الأساس على خلايا نحل العسل
MEASURING THE EFFECTS OF FOUNDATION ON HONEY BEE COLONIES
Wilson, M. W.r, J. Skinnerr, & L. Chadwells
اقترح بعض مربي النحل أن الأساس بنخاريب قطر 5.4مم يغير بيولوجيا نحل العسل بطريقة تزيد أعداد أكاروس الفاروا (Beesource.com). وكجزء من هذه الفكرة التي وصفت "بـنخروب النحل الطبيعي" أفيد أن النحل يبني نخاريب أصغر عندما يربى دون شمع أساس. لاختبار هذه الفكرة، جرى تربية خلايا نحل مع شرائط بادئة من خلال نزع الإسفين من أعلى الإطار وتطبيق قطعة من الشمع مكانها.
في عام 2007 بدأنا بعشرة خلايا فقط من تقسيمات خلايا بنخاريب طبيعية. تستخدم خمسة خلايا مراقبة (شاهد) الأساس الشمعي القياسي وخمس خلايا مراقبة تستخدم شرائح بداية خشبية. في عام 2008، هذه الخلايا العشرة لوحظت سنة أخرى، في حين عملت عشر خلايا جديدة من التقسيمات. تم تقسيم خمسة خلايا مراقبة من الخلايا الطبيعية من مجموعاتهم. مجموعة خلايا 2007 العشرة ومجموعة العشر خلايا لعام 2008 سمح لها ببناء ما يصل الى 3 صناديق متوسطة. عند الاقتضاء قدمت عاسلة فوق حاجز الملكة مع مشط ممطوط وأساس.
سجل متوسط سقوط الأكاروس الطبيعي في الـ 24 ساعة على مدى 3 أيام. خلال السنة الأولى لم تختلف مستويات الفاروا في الخلايا كثيراً. ومع ذلك، خلال السنة الثانية من مجموعة الخلايا 2007، كانت مستويات الفاروا أقل بكثير في خلايا النخاريب الطبيعية (60 ± 11 ، متوسط+- s.e.) مقارنة بخلايا المراقبة (114 ± 22 ، ف = 0.0004). وبالرغم من هذه الأرقام ، تجاوزت الخلايا في كل من المجموعتين العتبات الاقتصادية واختبرت موت خلايا.
سبب انخفاض مستويات الفاروا يبدو لا علاقة له بعامل حجم النخروب. كانت خلايا التحكم بحجم النخروب 5.3 ممmm ± 0.004 (يعني ن ± حد ذاتها ، = 493) في حين نخاريب الخلايا الطبيعية لديها حجم النخروب من عامل 5.4 مم mm ± 0.008. (ن = 381 ، ف ? 0.0001) في الخلايا ذات النخاريب الطبيعية لم يحدث انخفاض في الحجم بين 2 سنة (2007) و 3 سنوات (2008)من الإدارة بدون شمع أساس.
متوسط القوة في مجموعة خلايا 2007 لم يختلف كثيرا عند قياس معدل بناء القرص في ربيع عام 2007، وزن الخلية في صيف 2007، ومساحة النحل، حبوب اللقاح، الحضنة والعسل في عش الحضنة خلال صيف وربيع و خريف عام 2008. ومع ذلك، كان هناك فائض أكثر بكثير من العسل الذي أنتجته خلايا الشاهد (25.4 frames ± 3.9, mean ± s.e) عن خلايا النخاريب الطبيعية (5،5.4 frames ± 3.5; P = 0.0052). هذا الاختلاف قد يكون ناتجاً عن كمية أكبر من النخاريب الذكرية التي تنتجها الخلايا بنخاريب طبيعية (33% ± 3.5%, mean ± s.e) في مقابل خلايا الشاهد (1% ± 0.2; P ? 0.0001). وفرة إنتاج الذكور واضح في السنة الثانية من مجموعة 2007 (خلايا النخاريب الطبيعية)، بالمقارنة مع الشاهد. في السنة الأولى لخلايا النخاريب الطبيعية، كان إنتاج الذكور ليس واضحا.
في دراسة سابقة، (سيلي 2002 Apidologie 33 : 75-86) الخلايا بإطارات مع 20 بالمئة حضنة ذكرية شكلت نصف وزن خلايا المراقبة. بين سيلي أن الانخفاض كان عائداً للطاقة المبذولة لإنتاج الذكور، بالإضافة لزيادة تكاثر الفاروا الممكن. تشير هذه الدراسة إلى أن زيادة معدل تكاثر الفاروا في النخاريب الذكرية (Martin 1994 Exp Appl Acarol 18: 87-100) قد لا يزيد أعداد الفاروا الكلية في الخلايا المنتجة للذكور.
((نقلاً عن موقع نحلة www.na7la.com بإدارة الدكتور طارق مردود))
الأعلى
سبب تجنب نحل العسل زهور الأفوكادو وإمكانية اختيار خطوط وراثية لا يتفاداها النحل
Afik, O.a, A. Dagb, and S. Shafira – ل. أفيك، أ. داجب وس. شافيرا
النشاط المكثف لنحل العسل (Apis mellifera L.) ضروري لفاكهة جيدة مرغوب بها في بساتين الأفوكادو، ولكن حتى عندما تكون الخلايا داخل البستان، فإن العديد من النحل لا يزال يبحث عن أزهار بديلة، ربما يرجع ذلك إلى أن تركيز المعادن عالي في رحيق الأفوكادو (أفيك وآخرون 2006 J. Chem. Ecol. 32: 1949-1963). لقد بحثنا عن مكون وراثي يؤدي لعدم تجاوز أزهار الأفوكادو بالنسبة للأزهار المنافسة. وضعت خلية نحل في اثنين من بساتين الأفوكادو، واستخرج العسل من كل خلية على حدة في نهاية إزهار الأفوكادو. تم تحليل تركيز البيريسيتول perseitol ، الكربوهيدرات التي هي فريدة من نوعها للأفوكادو، لتستخدم كمؤشر لرحيق الأفوكادو (همرشولد وآخرون 2003، Apidologie 34 : 299-309).
خلال السنة الأولى جرت مقارنة خمس سلالات نحل. تم العثور على فروق معنوية بين السلالات في تركيزات الـبيريستول perseitol في العسل، مما يشير إلى اختلافات في كفاءتها كملقحات لأشجار الأفوكادو. اختيرت الخلايا ذات التركيزات الأعلى والأدنى من البيريستول perseitol المحدّد كأصل لخط وراثي 'عالي' و 'منخفض'، على التوالي. أخذت ملكات من الخلايا المختارة، كانت تلقح اصطناعياً بالحيوانات المنوية من ذكور من خلايا مماثلة. خلال السنوات الثانية والثالثة، أدخلت الخلايا ذات الملكات الملقحة إلى بساتين الأفوكادو، جنبا إلى جنب مع خلايا السنة السابقة التي بقيت على قيد الحياة. خلايا النحل من خط عالي البريستول كان عسلها ذو تركيزات أكبر من خلايا خط منخفضة البيريستول perseitol، على الرغم من أن الاختلافات كانت معنوية فقط في السنة الثانية. كل سنة، توضع خلايا النحل المختارة التي نجت من العام السابق مرة أخرى، سواء كانت من خط التركيزات العالية أو المنخفضة، مع مثيلاتها، خلال السنة التالية.
تم اختبار خمسة خلايا من كل سطر، يتم اختيارهم حسب أدائهم في الحقل خلال السنة الثانية بالنسبة لحساسيتها للمعادن في تجربة ثانية. كان كل من هذه الخلايا يحتفظ به في التجربة منفصلة. زودت الخلايا بخمسة غذايات مع محلول السكروز المضاف لها معادن بتركيزات متزايدة. وأجريت مجموعتان من التجارب بنمط الكافتيريا. اختبرت المجموعة الاولى لحساسيتها للفوسفور والبوتاسيوم (K2HPO4) ، والثانية اختبرت حساسيتها للمغنيسيوم والكبريت (MgSO4). تم الكشف عن كل هذه المعادن في رحيق الأفوكادو. قام كلا النوعين من التغذية بمزيج من المعادن بتركيزات مشابهة لهذه في رحيق الأفوكادو بصد النحل، ولكن لم تصدها تركيزات مماثلة لتلك التي في رحيق الحمضيات، مصدر الرحيق المنافس. تركيبة المغنيسيوم والكبريت كانت أكثر مثيرة للاشمئزاز، ولكن تركيزهما في الرحيق كان أيضا أقل. حدث الإخصاب على الرغم من ذلك ، تم الكشف عن وجود فوارق بين الخلايا من خطوط جينية مختلفة في تفضيلها بين المحاليل ذات التركيزات المعدنية المتفاوتة.
تكشف النتائج عن وجود عنصر وراثي لجرس النحل لزهور الأفوكادو. ويمكن استخدام هذا المكون الجيني لتحسين تلقيح الأفوكادو من خلال تحديد سلالة النحل الأكثر كفاءة. وقد نكون قادرين على تحقيق مزيد من التحسن في كفاءة التلقيح من خلال برنامج تربية على المدى الطويل. تظهر النتائج أيضا الدور الهام للمعادن في ردع النحل عن جرس الرحيق من زهور الأفوكادو. ويجوز أن حساسية مماثلة من هذين الخطين من النحل للمعادن تشير إلى أن هناك سمات إضافية، لغير الحساسية المعدنية ، والتي تؤثر على مستوى تفضيل الطائفة لرحيق الأفوكادو.
الأعلى
اختبار لتأثيرات شبه قاتلة من المواد الكيميائية شائعة الاستعمال في الخلايا
Delaplane, K. S.h and J. A. Berryh - ك.ديلابلان و ج.ا. بيراي
هناك أدلة على أن بعض المواد الكيميائية المستخدمة بصورة روتينية في تربية النحل تشكل خطرا على النحل وفي أنها مساهمة في انخفاض النحل. بقايا من هذه المواد الكيميائية منتشرة (فرايزر وآخرون 2008، مجلة النحل الأمريكية 148 (6) : 521-523) ، وتحدث آثارها على المستويات شبه القاتلة التي ليس من السهل الكشف عنها عن طريق الملاحظة العارضة (ديسينيو وآخرون 2007 فيAnn Rev Entomol 52-: 81-106).
وفهم هذا جزء من لغز اعتلال تدهور طائفة النحل CCD سيساعد النحالين التحرك لإدارة تنحو نحو أقل استخدام للمواد الكيميائية. ونحن ماضون في تجربة لسنتين وفي ولايتين لدراسة الآثار شبه القاتلة من مواد كيميائية مستعملة في خلايا النحل، وشملت قائمة المواد المسجلة بالمعدلات الموصى بها، فضلا عن اثنين من الصيغ خارج ذلك. ونورد هنا النتائج لسنة واحدة من جورجيا. وبالمقارنة مع الضوابط غير المعالجة ، وجدت آثار سلبية كبيرة على منطقة الحضنة لـلمافرك Maverik) =fluvalinate)) و الـشيكمايت CheckMite) =coumaphos) ، على قدرة النحل على التعلم لمادة حفظ الخشب (نافثينات النحاس) والمافرك Maverik ، وعلى ذاكرة النحل لنافثينات النحاس وTaktic (أميتراز - ميتاك).
جدول: التأثيرات الشبه قاتلة لبعض الكيماويات المستعملة في الخلايا (متوسطات)
القيم وسطية والإشارات تعني:
- ± الخطأ المعياري.
- الأرقام الواردة بين قوسين = ن.
- القيم التي يتبعها الحرف نفسه لا تختلف كثيرا (α = 0.05). حيث لا يتم عرض أي أحرف ما لم تكن هناك فروق بالعمود.
- عندما لا يوجد حرف فمعناه أنه لا توجد فروق في العمود.
- المادتان المسميتان Maverik وTaktic غير مصرح باستخدامها في خلايا النحل.
الكيمياويات |
النوزيما (النحل ? +) |
حيوية الحضنة (? الحضنة المفتوحة على قيد الحياة بعد 3 د) |
الحضنة (سم 2) |
التعلم 1 |
الذاكرة 2 |
غير المعالجة |
2.8 ± 1.4 (3) |
98.4 ± 0.8 (11) |
5810 ± 809 (16) (أ) |
1.1 ± 0.2 (75) أب |
35.5 ± 6.7 (8) (أ) |
نافثينات النحاس (3) |
2.9 ± 2.9 (3) |
89.6 ± 3.5 (10) |
4315 ± 667 (15) (ب) |
1.0 ± 0.2 (72) أب |
44.8 ± 5.9 (8) (أ) |
Apistan (fluvalinate) |
8.0 ± 3.4 (7) |
91.8 ± 2.1 (14) |
4735 ± 532 (16) أب |
1.4 ± 0.2 (61) (أ) |
58.7 ± 5.5 (8) (أ) |
CheckMite (coumaphos) |
2.9 ± 2.9 (3) |
89.6 ± 3.5 (10) |
4315 ± 667 (15) (ب) |
1.0 ± 0.2 (72) أب |
44.8 ± 5.9 (8) (أ) |
Maverik (fluvalinate) |
8.2 ± 2.6 (6) |
92.8 ± 2.4 (10) |
4504 ± 546 (14) (ب) |
0.6 ± 0.1 (71) (ب) |
36.8 ± 10.8 (8) (أ) |
Taktic (أميتراز) |
7.2 ± 1.5 (3) |
91.2 ± 1.8 (11) |
4667 ± 682 (15) أب |
1.2 ± 0.2 (78) أب |
8.1 ± 3.4 (8) (ب) |
ملاحظات:
1. تم قياس التعلم كمجموع النحل الذي يستجيب على سلسلة من المحاولات لمدة 6 ثواني التعلم مع مقايسة تمديد ململة منعكس (مالون وفام délégué - 2001 ، Apidologie 32 : 287-304).
2- وقد تم قياس الذاكرة كنسبة مئوية من النحل أعلاه مشروطة بالاستجابة للحوافز ، بعد مرور 56 دقيقة.
3 تم تطبيق مادة حافظة الخشب (نافثينات النحاس) مذابة بالماء بنسبة 2 ٪ على لوحة الخشب الرقائقي ثم يسمح بتجفيفها بالهواء الجاف ثم توضع على أرضية الخلية.
الأعلى
انجذاب حلم الفاروا VARROA
للمواد المتطايرة من نحل العسل
م. كارول، أ. دويلك، س. ويللمسك وب. تيالك
يبدأ حلم الفاروا غزو نخروب من نخاريب الحضنة المغلقة من خلال الكشف عن الاشارات المضطربة من الهدف/ المضيف في الخلية المضيفة. قارنا المواد المتطايرة المجموعة من الحضنة من مختلف الطوائف والأعمار لتحديد رائحة المركبات المرتبطة تحديدا مع الانجذاب لليرقات المضيفة. وقد تم جمع المواد المتطايرة من فراغ الرأس الموجود في الموقع قبالة مشط الحضنة المغلقة النشط ضمن أطر مراقبة من الزجاج والألومنيوم ، وأزيلت المواد المتطايرة من خلال نظام دفع/ سحب لجمع المواد المتطايرة ثم احتجازها في تعليب امتصاصي متميز Super Q absorbant packing.
تم استخراج المواد المتطايرة التي تم جمعها عن طريق تعليب امتصاصي متميز Super Q absorbant packing ، التي حددتها GC-MS، وحددتها GC-FID. كان ينبعث مركبين لم يعرف إسمها (رمز لهما بـ CA وCB) بمعدلات أعلى من إطارات الحضنة الجذابة (ذكور> شغالات>> ملكات) ومراحل التطور (الحضنة المغلقة والتي يجري إغلاقها) من إطارات أقل جاذبية ومراحل الحضنة (اليرقات الأصغر سنا). استجابت كلاالحلم الطليق والمنتقل للـ CA والـ CB بدرجات متزايدة في الانجذاب نحو مصدر الرائحة.
الأعلى
استجابة أكاروس الفاروا للمواد المتطايرة من مضيفه نحل العسل
Duehl, A.c, M. Carrollc and P. E. A. Tealc
يستطيع أكاروس الفاروا التعرف بنجاح على نخاريب الحضنة التي تكون على وشك الإغلاق ودخولها. وقد وجدنا أن المواد المتطايرة كافية لإغراء الأكاروس لدخول النخاريب. من اجل اظهار ان أكاروس الفاروا يمكنه الكشف عن المكونات الكيميائية المحددة التي وجدناها في مختلف أعمار الحضنة ، استخدمنا تقنيات كهربية- فيزيولوجية.
عند اختبار مستوى من المواد المتطايرة من الخلية على مستخلص أرجل الأكاروس بواسطة GC-EAD ، وجدنا استجابة واضحة لقمة واحدة واستجابات طفيفة لاثنين من القمم الإضافية (المركب CA و CB ؛ انظر مستخلص كارول في الموضوع السابق).
). نحن، لمزيد من تحليل هذه الردود من خلال تفاعل الأرجل مع الكشف عن نفخة EAG puff ، وجدنا أن هذه المواد الكيميائية تنتج بالفعل استجابات واضحة من المستشعرات للكيماويات chemosensillae لدى الأكاروس. ولم تبد روائح خلية مشتركة أخرى مثل خلات فرمون التنبيه isopentyl acetate استثارة رد فعل من الأرجل.
هذا يدل على أن الأكاروس يمكنه فقط الكشف عن أنواع معينة من المركبات، والتي تشمل بعض هذه المركبات التي كشفنا عنها بكميات متزايدة مع اقتراب الإغلاق على اليرقات.
الأعلى
السلوك الصحي نحو أكاروس الفاروا VARROA الموجود في الحضنة المغلقة لا يتوقف على حالة الأكاروس الإنجابية
Harris, J. W.m, R. G. Dankam & J. D. Villam
استنبطت سلالة النحل المقاومة للفاروا (VSH) بشكل انتقائي لمستويات عالية من الحساسية للفاروا تتميز بالحد الأدنى من:
( 1) معدل الإصابة بالأكاروس (Harris 2007 J. Apic. Res. / Bee World 46: 134-139) و
(2) النسبة المئوية من الأكاروس الخصب (Harris and Harbo 1999 J. Econ. Entomol. 92: 83-90) بعد تعريض الحضنة المغلقة المصابة بطبيعة الحال إلى النحل.
ويمكن أن يشرح التخلص الانتقائي من اليرقات التي تعج بالأكاروس الخصب (تلك التي مع ذرية) كل النتائج (Harbo and Harris 2005 J. Apic. Res. 44: 21-23).
هذه التجربة اختبار لتحيز النحل VSH لمضغ اليرقات التي تعج بالأكاروس الخصب. وضعت إطارات من الحضنة المصابة طبيعيا في خلايا كعامل مراقبة (ن = 12)، وفي خلايا الهجين VSH (ن = 7)، و في خلايا VSH الصرفة (ن = 8) لمدة 3 ساعات. تمت حماية نصف الحضنة المغلقة على كل الإطار بواسطة شاشة لمنع التلاعب بالحالة الصحية من قبل النحل. وبمقارنة النسبة المئوية من الأكاروس الخصب في الحضنة المحمية مع نسبة الأكاروس الخصب من اليرقات الممضوغة في نهاية المطاف.
يجب إزالة التحيز في اليرقات مع الأكاروس الخصب زيادة الخصوبة (أي أعلى من المستويات الخلفية من الحضنة المحمية) من الأكاروس في اليرقات الممضوغة التي يجري إزالتها من الحضنة التي يغلقها النحل. كان تعرض الحضنة إلى النحل محدودا بـ 3 ساعات حتى أن النحل يمكنه الممارسة الصحية برفع غطاء اليرقات التي ينتشر فيها الأكاروس ويبدأ بمضغ بعض منها، ولكن الفاصل الزمني قصير جدا للسماح بإزالة كاملة لليرقات الأكثر استهدافا. وكانت نسبة الأكاروس الخصب في اليرقات الممضوغة لا تختلف كثيرا عن تلك التي يكون الأكاروس من الحضنة المحمية (? = 0،05). لم تكن هناك اختلافات كبيرة في النسبة المئوية من الأكاروس الخصب في اليرقات الممضوغة بين ثلاثة أنواع من النحل على الرغم من الاختلافات الكبيرة في نشاط النظافة العامة (النحل VSH الهجين والصرفة يمضغ أكثر من اليرقات من خلايا النحل المراقبة).
تشير هذه النتائج إلى أن النحل VSH قام بإزالة اليرقات التي عليها أكاروس مستقلة عن وجود نسل أكاروس (الشكل).
وهكذا، يجب أن تجرى العمليات الأخرى المتصلة بالسلوك الصحي لنحل VSH باتجاه خفض وتيرة الأكاروس الخصب في الحضنة المغطاة.
الأعلى
تثبيط التعبير الجيني لفيروس الجناح المشوه (DWV) وتكراره في عسل النحل بواسطة تدخل الرناRNA
س. ديساي ، ي. أوي و ر. كوريي
VIRUS (DWV) GENE EXPRESSION AND REPLICATION IN HONEY BEES
Desai, S.i, Y. J. Eui & R. Curriei
عسل النحل وملقحات المحاصيل الهامة تلعب دوراً حاسماً وتساهم بدور هام في إنتاج محاصيل تبلغ القيمة السوقية لها بما يتجاوز 217 مليار دولار على أساس عالمي (Science Daily, 2008). تعتبر الفيروسات من بين مسببات الأمراض لنحل العسل واحدة من التهديدات الرئيسية للصحة، وتفاعلاتها مع حلم الفاروا سببت مشاكل خطيرة لصناعة تربية النحل.
الشكل التالي: الحمض النووي DNA لبناء رناي RNAi. تندس نسختان من 700 bpمن RdRp من DWV700 bp of RdRp of DWV في مواقع انزيم تقييد NcoI وEcoRI في اتجاه عكسي. يتكون حمض نووي ريبي مزدوج قياسي باستعمال T7 RNAبوليميراز في ظروف مخبرية خارج الجسم الحي in vitro.
الحمض النووي DNA لبناء رناي RNAi |
|
تندس نسختان من 700 bp من RdRp من DWV 700 bp of RdRp of DWV في مواقع انزيم تقييد NcoI وEcoRI في اتجاه عكسي. يتكون حمض نووي ريبي مزدوج قياسي باستعمال T7 RNA بوليميراز في ظروف مخبرية خارج الجسم الحي in vitro.
|
|
المقدرة على السيطرة على الفيروسات مباشرة يمكن أن تكون ذات فائدة كبيرة لأنها قد تسمح للنحالين على تحمل مستويات أعلى من الحلم دون أن يعانون من خسائر اقتصادية.
والهدف من أبحاثنا هو تثبيط فعل جين الفيروس المشوه للجناح وتطبيقه في نحل العسل بواسطة تدخل الرنا RNA.
تدخل رناي (RNAi) هي طريقة بسيطة وسريعة ومحددة لإسكات وظيفة الجين. رناي RNAiيقلل التعبير الجيني عن طريق التسبب في تدهور مرنا mRNA أو RNA الفيروسي المستهدف. وقد تم مؤخرا استخدام الحمض النووي الريبي التدخل في عدد من الأنواع بما فيها البشر والنباتات والحيوانات والحشرات (ذبابة الفاكهة) لقمع الفيروسات. في هذه الدراسة،قرنا المنطقة 700bp من الحمض النووي الريبي بواسطة بوليميراز الحمض النووي الريبي التابعة (RdRp) الجين في البلازميد مع T7 المحفز في اتجاهات عكسية وأمامية (الشكل). لاحقاً قرنا بتكرار مقلوب المنطقة 700bp أعلاه إلى البلازميد مع T7 المحفز. وجاء هذا الاستهداف للرنا المزدوج الجديلة مرنا RdRp باستخدام النسخ في المختبر مع بوليميريز الحمض النووي الريبي T7.
تغذية الرنا المزدوج الجديلة dsRNA لنحل العسل (أو التطبيقات الموضعية) يجب أن تؤدي لانخفاض في عيار DWV. وينبغي لهذا بدوره أن يطيل العمر الافتراضي للنحل نسبة للعدوى بـ DWV نسبة إلى النحل المصاب الغير معالج.
التجربة المبينة أعلاه ستزيد من فهمنا للفيروسات كيف يؤثر على العمر الافتراضي لنحل العسل وسيتم استخدام التطورات الحديثة في البيولوجيا الجزيئية لتطوير أساليب للسيطرة على الفيروسات. إذا نجحت، فإن النتائج ستساعد مربي النحل لإدارة نحل العسل في ظروف ارتفاع عتبات حلم الفاروا مع الحد من احتمال فقدان الطائفة.
الأعلى
الوقت الأمثل لتغذية الخلايا بالبروتين شتاءً لتحضير نحل العسل لتأبير اللوز
OPTIMUM TIME FOR FEEDING PROTEIN TO WINTERING HONEY BEE COLONIES IN PREPARATION FOR ALMOND POLLINATION
Eischen, F.A.j, R. H. Grahamj, and R. Riveraj
فحصت هذه الدراسة الوقت الملائم لتغذية طوائف نحل العسل بالبروتين في معظم فصل الشتاء في الجنوب (إسكونديدو) والوسط ( موديستو كاليفورنيا). في كلا المكانين، اختيرت بشكل عشوائي مجموعات من 30 خلية. بداية الوقت في بداية سبتمبر 2007 واستمرت طيلة أكتوبر، نوفمبر، ديسمبر ويناير 2008. منذ البداية، كانت الطوائف تغذى بـ
BeePro +4? غبار طلع باستمرار حتى جرى التقييم في أواخر يناير 2008. وجرى تقييم الخلايا بتقدير كميات حضنة النحل والنحل البالغ قبل بدء التجربة وفي نهايتها (الجدول).
وكانت معاملة الطوائف في كلا الموقعين متماثلة فيما يتعلق بأوقات بدء التغذية. أداء الخلايا الغير مغذاة (مراقبة) بدت أفقر بفقدان حوالي 31 حتي 40 ? من النحل البالغ عند انطلاق التجربة (الجدول). بينما اكتسبت الطوائف المغذاة بشكل مستمرخلال يناير حتى سبتمبر 31.9 ? في المتوسط من القوة، والذي كان أفضل أداء. الخلايا التي بدأت تغذيتها في أكتوبر ونوفمبر اكتسبت كثيراً من النحل البالغ، بينما التي بدأت تغذيتها من ديسمبر ويناير فقدت من قوتها. نخلص إلى أن التغذية في وقت مبكر متفوقة على التغذية في وقت متأخر خلال موسم الشتاء.
الجدول - وقت البدء بالتغذية وقوة النحل في الخلايا قرب إسكونديدو، كاليفورنيا.
شهر بداية التغذية
|
ن (عدد الخلايا)
|
بداية قوة النحل 1
|
نهاية قوة النحل
|
التغير %
|
سبتمبر/أيلول 2007
|
30
|
6.8
|
8.4
|
+31.9
|
أكتوبر/تشرين أول
|
28
|
6.3
|
8.0
|
+27.3
|
نوفمبر/تشرين ثاني
|
28
|
6.1
|
6.7
|
+10.3
|
ديسمبر/كانون أول
|
28
|
7.0
|
6.3
|
-9.1
|
يناير/كانون ثاني 2008
|
25
|
6.8
|
5.6
|
-13.5
|
الشاهد (بدون تغذية)
|
28
|
6.3
|
4.3
|
-31.1
|
1) في كل القياسات كانت تقدر الوحدة بعشر (1/10) إطار خلية لانجستروث.
الأعلى
تقنيات جديدة تسمح باستعمال قياسات ظاهرية
MORPHOMETRIC
بتحديد نوع وتحت نوع سلالات النحل استناداً لأشكال تعريق الأجنحة
د. ف. دي جونج، ت. م. فرانكويف و ل. س. جونتشالفيسج
بما أن النحل المتأفرق Africanized honey bees قد انتشر عبر الأمريكتين، فقد أصبح تمييزه مسألة بأهمية كبيرة. لعبت القياسات الظاهرية morphometrics دوراً هاماً في التصنيف (Daly et al. 1982 Ann. Entomol. Soc. Am. 75: 591-594).. ومع ذلك فإن إعداد العينات يستغرق وقتا طويلا، مما يزيد التكاليف ويحد بدرجة كبيرة من عدد العينات التي يمكن معالجتها. في الوقت الراهن، مع التقدم الحاصل في التقنيات الحاسوبية أدت إلى تحسن كبير في صحة هذه التحليلات وخفضت الوقت اللازم لتحديد أنواع النحل وسلالاته (Francoy et al. 2006 Apidologie 37:91–97; Mendes et al. 2007 Biosci. J. 23: 147–152; Francisco et al. 2008 Insectes Sociaux 55: 231–237)..
واحدة من هذه التقنيات الجديدة هو نظام التعرف الآلي على نحل (Automatic Bee Identification System (ABIS)) ، الذي تم تطويره في جامعة بون في ألمانيا. (ABIS) هو نظام آلي بالكامل يستخدم ميزات الجناحين الأماميين forewing المستخرجة من الصور لتمييز أنواع النحل.. وكان قادرا على تمكين الاعضاء الاوروبيين من تمييز أجناس Andrena وColletes, Bombus على مستوى الأنواع مع دقة 99،8 % (Steinhage et al. 2001).
ورشة عمل BIOLOG ، البرنامج الألماني لدراسة التنوعبالبيولوجي والتغير العالمي ،( تقرير الحالة ، ص ص 194.. -- 195) ، والتي تم بواسطتها تحديد 94 % من عدة سلالات نحل عسل بشكل صحيح (Francoy et al. Genet. Mol. Res. in press). عندما كانت تستخدم لتحديد نحل العسل المتأفرق بال%قارنة مع غيرها من سلالات نحل العسل، حققت نجاحاً بنسبة 99،98 % ، ولم تحتاج إلى أكثر من دقيقتين لتحديد كل عينة (Francoy et al. 2008 Apidologie 39: 488–494).
منهجية آخرى بمساعدة الحاسوب لدراسة التباين بين الكائنات الحية شكل يسمى التحليل النسبي للتلوي relative warp analysis؛ يقوم على معالم وريد الجناح والاختلاف في هذه النقاط كإحداثيات ديكارتية (Bookstein, 1991, Morphometric tools for landmark data, Cambridge University Press).. ميزتها على القياسات الظاهريةmorphometrics التقليدية هو أن الإحداثيات الديكارتية تحافظ على معلومات عن الوضع النسبي لهذه النقطة، مما يسمح لنا بإعادة بناء شكل هيكل تحليلها وتحديد واضح للاختلاف في النقاط. وقد استخدمنا هذا الأسلوب لتحديد أنواع النحل والسلالة مما ساعد في اكتشاف أنواع جديدة من النحل (Francoy et al. Genet. Mol. Res. in press).. وقد حققنا نجاحاً بنسبة 99،2 % عند تطبيقه على التفريق بين النحل الإفريقي من سلالات النحل الفردية، بل أيضا لديه ميزة أن كل البرامج المطلوبة هي متاحة بحرية على شبكة الإنترنت (Francoy et al. 2008 Apidologie 39: 488–494). كما تم تحديد تحت المجموعات subpopulations والفروق بين جنسي النحل مع هذه المنهجية. هذه التقنيات الجديدة مفيدة جدا للمساعدة في حل المسائل البيولوجية والتنظيمية اللازمة لتلبية الاحتياجات، مع ميزة كونها رخيصة وسريعة، وأنها لا تحتاج الى مختبرات متخصصة وشخصية، وهذا يجعل morphometrics بديلا جذابا جدا عن الأساليب الحديثة الأخرى، مثل تحليل الحمض النووي، والتي هي أكثر كلفة بكثير وتتطلب مختبراً متطوراً.
(Francoy et al. 2008 Apidologie 39: 488–494).
منهجية آخرى بمساعدة الحاسوب لدراسة التباين بين الكائنات الحية شكل يسمى التحليل النسبي للتلوي relative warp analysis؛ يقوم على معالم وريد الجناح والاختلاف في هذه النقاط كإحداثيات ديكارتية (Bookstein, 1991, Morphometric tools for landmark data, Cambridge University Press).. ميزتها على القياسات الظاهريةmorphometrics التقليدية هو أن الإحداثيات الديكارتية تحافظ على معلومات عن الوضع النسبي لهذه النقطة، مما يسمح لنا بإعادة بناء شكل هيكل تحليلها وتحديد واضح للاختلاف في النقاط. وقد استخدمنا هذا الأسلوب لتحديد أنواع النحل والسلالة مما ساعد في اكتشاف أنواع جديدة من النحل (Francoy et al. Genet. Mol. Res. in press).. وقد حققنا نجاحاً بنسبة 99،2 % عند تطبيقه على التفريق بين النحل الإفريقي من سلالات النحل الفردية، بل أيضا لديه ميزة أن كل البرامج المطلوبة هي متاحة بحرية على شبكة الإنترنت (Francoy et al. 2008 Apidologie 39: 488–494). كما تم تحديد تحت المجموعات subpopulations والفروق بين جنسي النحل مع هذه المنهجية. هذه التقنيات الجديدة مفيدة جدا للمساعدة في حل المسائل البيولوجية والتنظيمية اللازمة لتلبية الاحتياجات، مع ميزة كونها رخيصة وسريعة، وأنها لا تحتاج الى مختبرات متخصصة وشخصية، وهذا يجعل morphometrics بديلا جذابا جدا عن الأساليب الحديثة الأخرى، مثل تحليل الحمض النووي، والتي هي أكثر كلفة بكثير وتتطلب مختبراً متطوراً.
الأعلى
مسموح النقل من الموقع شريطة ذكر الموقع والمؤلف www.na7la.com 2007-2011
|